DB37/T 3319-2018 水貂、狐和貉犬瘟热病毒等10种病毒性病原实时荧光PCR检测方法
DB37/T 3319-2018 The real-time fluorescence PCR detection methods for 10 viral pathogens including mink, fox, and raccoon dog distemper viruses
基本信息
发布历史
-
2018年06月
研制信息
- 起草单位:
- 起草人:
- 出版信息:
- 页数:8页 | 字数:- | 开本: -
内容描述
ICS65.020.30
B41
DB37
山东省地方标准
DB37/T3319—2018
水貂、狐和貉犬瘟热病毒等10种病毒性病
原实时荧光PCR检测方法
Real-timefluorescentPCRfordetectingofdistempervirusandother10viral
pathogensofmink,foxandraccoondog
2018-06-12发布2018-07-12实施
山东省质量技术监督局发布
DB37/T3319—2018
前言
本标准按照GB/T1.1—2009给出的规则起草。
本标准的附录为资料性附录。
本标准由山东省畜牧兽医局提出。
本标准由山东省畜牧业标准化技术委员会归口。
本标准主要起草单位:山东省动物疫病预防与控制中心、山东大学生命科学学院、威海市动物疫病
预防控制中心。
本标准主要起草人:王贵升、王金宝、田夫林、张鹤晓、崔凯、张月、张华杰。
I
DB37/T3319—2018
水貂、狐和貉犬瘟热病毒等10种病毒性病原实时荧光PCR检测方法
1范围
本标准规定了水貂、狐和貉犬瘟热病毒等10种病毒性病原实时荧光PCR检测方法。
本标准所规定的实验室检测方法适用于水貂、狐和貉的犬瘟热病毒、细小病毒、冠状病毒、轮状病
毒、星状病毒、阿留申病毒、杯状病毒、博卡病毒、圆环病毒、伪狂犬病毒等10种病毒的荧光PCR检测
方法,其他动物参考。
2规范性引用文件
下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅所注日期的版本适用于本文
件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。
GB19489实验室生物安全通用要求
GB/T27401实验室质量控制规范动物检疫
GB/T6682分析实验室用水规格和实验方法
3缩略语
荧光PCR实时荧光聚合酶链式反应
Ct值每个反应管内的荧光信号量达到设定的阈值时所经历的循环圈数
DNA脱氧核糖核酸
RNA核糖核酸
Taq酶TaqDNA聚合酶
PBS磷酸盐缓冲生理盐水
4试剂和材料
4.1荧光定量PCR检测仪及配套反应管(板)。
4.2高速台式冷冻离心机(离心速度12000r/min以上)。
4.3混匀器。
4.4恒温水浴锅。
4.5冰箱(2℃~8℃和-20℃两种)。
4.6微量移液器(0.5L~10L,5L~20L,20L~200L,200L~1000L)及配套吸头。
4.71.5mL离心管(无核酸酶)。
4.8DNA\RNA核酸提取试剂等。
5样品的采集与前处理
1
DB37/T3319—2018
采样过程中样本不得交叉污染,采样及样品前处理过程中须戴一次性手套。
5.1取样工具
5.1.1棉拭子、剪刀、镊子、研钵、Eppendorf管。
5.1.2所有上述取样工具必须经(121±2)℃,15min高压灭菌并烘干或经160℃干烤2h。
5.2采样方法
5.2.1拭子样品
a)咽喉拭子采样,采样时要将拭子深入喉头及上腭来回刮3次~5次,取咽喉分泌液。然后将
拭子插入到装有1.0mLPBS无菌Eppendorf管中,编号备用。
b)肛拭子采样,采样时要将拭子深入肛门回刮3次~5次,取排泄物。然后将拭子插入到装有
1.0mLPBS无菌Eppendorf管中,编号备用。
5.2.2内脏或肌肉样品
用无菌的剪刀和镊子剪取待检样品1.0g于研钵中充分研磨,再加5.0mLPBS混匀,然后将组织悬
液转入无菌Eppendorf管中,编号备用。
5.2.3血清或血浆
用无菌注射器直接吸取至无菌Eppendorf管中,编号备用。
5.3存放与运送
采集或处理的样本在2℃~8℃条件下保存应不超过24h;若需长期保存,须放置-70℃以下冰箱,
但应避免反复冻融(最多冻融3次)。采集的样品密封后,采用保温设施加冰密封,尽快运送到实验室。
6引物及探针
引物及探针见表1“荧光PCR方法的引物及探针”。
表1荧光PCR方法的引物及探针
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