GB/T 33119-2016 葡萄藤猝倒病菌检疫鉴定方法
GB/T 33119-2016 Detection and identification of Eutypa lata(Pers.)Tul.et C.Tul
基本信息
本标准适用于葡萄等寄主植物中葡萄藤猝倒病菌的检疫和鉴定。
发布历史
-
2016年10月
研制信息
- 起草单位:
- 中华人民共和国山东出入境检验检疫局、青岛检验检疫技术发展中心、中华人民共和国宁波出入境检验检疫局、中华人民共和国安徽出入境检验检疫局、中华人民共和国湖北出入境检验检疫局、中国科学院微生物研究所
- 起草人:
- 王英超、段维军、厉艳、吴兴海、封立平、魏晓棠、甘琴华、纪瑛、邵秀玲、姚剑、王振华、郭立新、蔡磊
- 出版信息:
- 页数:12页 | 字数:22 千字 | 开本: 大16开
内容描述
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中华人民共和国国彖标准
GB/T33119—2016
葡萄藤猝倒病菌检疫鉴定方法
DetectionandidentificationofEutypalata(Pers.)Tul.etC.Tul
2016-10-13发布2017-05-01实施
GB/T33119—2016
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本标准按照GB/T1.1—2009给出的规则起草。
本标准由全国植物检疫标准化技术委员会(SAC/TC271)提出并归口。
本标准起草单位:中华人民共和国山东出入境检验检疫局、青岛检验检疫技术发展中心、中华人民
共和国宁波出入境检验检疫局、中华人民共和国安徽出入境检验检疫局、中华人民共和国湖北出入境检
验检疫局、中国科学院微生物研究所。
本标准主要起草人:王英超、段维军、厉艳、吴兴海、封立平、魏晓棠、甘琴华、纪瑛、邵秀玲、姚剑、
王振华、郭立新、蔡磊.
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GB/T33119—2016
葡萄藤猝倒病菌检疫鉴定方法
1范围
本标准规定了葡萄藤猝倒病菌的检疫鉴定方法。
本标准适用于葡萄等寄主植物中葡萄藤猝倒病菌的检疫和鉴定。
2规范性引用文件
下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅注日期的版本适用于本文
件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。
GB/T6682分析实验室用水规格和试验方法
SN/T2122进出境植物及植物产品检疫抽样
SN/T2589植物病原真菌检测规范
3葡萄藤猝倒病菌基本信息
学名tEutypalata(Pers.)Tul.etC.Tul.
异名:EutypcicirmeniucueHansf.M.V.Carter;fra.rhii(Nitschke)Sacc;Eutypamil
liaria(Fr.)Sacc.;Eutypalatavar.acerisRappaz?Mycol.Helv;CytosftorinalataHohn;Libertella
blepharisA.L.Sm.
分类地位:采用《真菌词典》第10版分类系统,葡萄藤猝倒病菌{Eutypa人加)属真菌界(Fungi),子
囊菌门(Ascomycota),盘菌亚门(Pezizomycotina),粪壳菌纲(Sordariomycetes),炭角菌目
(Xylariales),蕉抱壳科(Diatrypaceae),弯抱壳属(EutypaTuL&C.Tul.1863)o
传播途径:植物体在贸易和运输中能够传播该病害。植物体主要指树皮(抱子和菌丝),地上部分的
茎、嫩枝、主干、枝条(菌丝),木材(抱子和菌丝)等。
葡萄藤猝倒病菌的其他信息参见附录A。
4方法原理
葡萄藤猝倒病菌的为害症状、分离培养性状、形态特征和特异性PCR检测结果等是该检疫鉴定方
法的主要依据。
5仪器设备和主要试剂
5.1仪器设备
生物显微镜、电子天平(感量0.001g)、离心机(12000g)、普通冰箱、超低温冰箱(一80°C)、涡旋振
荡器、恒温光照培养箱、高压灭菌器、生物安全柜、PCR仪、电泳仪、凝胶分析成像系统、可调微量加样
器、全自动DNA提取仪。
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GB/T33119—2016
5.2主要试剂
除另有规定外,所有试剂均为分析纯,实验用水应符合GB/T6682中相关规定。
0.5%次氯酸钠(NaCK))、葡萄糖、琼脂、硫酸链霉素、盐酸金霉素、氯硝胺。
6现场检疫
按照SN/T2589,仔细检查寄主植物的茎、枝条、叶片等部位是否出现疑似症状(参见附录A)。茎
部主要看有无溃疡症状;枝条是否长势短小,发育受阻,着生的叶子是否萎黄,卷缩变形或破碎;顶部是
否出现枯萎症状。对可疑植物、繁殖材料应取样送实验室做进一步检验,取样方法和步骤参照
SN/T21220
7实验室检疫
7.1PCR凝胶电泳初筛检测
将第6章中的可疑植物、繁殖材料等样品进行PCR初筛检测,PCR凝胶电泳检测见附录B。对于
阳性结果进行下一步检测。
7.2病原菌的分离和培养
7.2.1马铃薯葡萄糖琼脂培养基和选择性培养基的制备
马铃薯(去皮)200g;葡萄糖20g;琼脂15g;蒸憾水补至1000mL,121£湿热灭菌20min备用。
分离培养时加硫酸链霉素(100卩g/mL)、盐酸金霉素(50卩g/mL)、氯硝胺(5(ug/mL)作为选择性培
养基。
7.2.2病原菌检查
检查寄主的树皮、枝条等组织有无子座、子囊壳,在显微镜下观察病菌的子囊壳,记录其形态特征,
测量子囊和子囊抱子的大小。所获得分离物在马铃薯葡萄糖琼脂培养基进行单抱分离纯化。
7.2.3组织中病原菌的分离和培养
如果发现可疑症状,但不能按7.2.2进行有性型形态检查,应采取下列分离培养的方法做进一步的
鉴定。剥去树皮,纵向劈开树干露出内部溃疡的边缘。在无菌条件下,从溃疡部分的外部边缘切取
1cm?的薄木片,放在0.5%次氯酸钠溶液中浸泡2min〜5min,用无菌水重复洗3次,然后用无菌滤纸
吸干,放在选择性培养基上进行培养。24°C培养4d〜7d后,将疑似菌落转到马铃薯葡萄糖琼脂培养
基上进行分离纯化。
8鉴定特征
&1PCR凝胶电泳初筛检测
判定结果见附录Bo
&2培养性状
葡萄藤猝倒病菌在PDA培养基首先形成白色棉絮状菌丝,培养基背面奶油色。2周后,培养基上
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GB/T33119—2016
出现灰色色素,培养基背面变成黑色。3周〜4周后,在连续的光照培养下,形成小的黑色的分生抱子
器。分生抱子丝状,直或弯曲,数量多,大小(20m〜45/am)X(0.8
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