DB37/T 3991-2020 食品中溴氰虫酰胺残留量的测定 液相色谱-质谱/质谱法
DB37/T 3991-2020 Determination of Residue of Bromo-cyhalothrin in Food by Liquid Chromatography-Mass Spectrometry/Mass Spectrometry (DB37/T 3991-2020)
基本信息
发布历史
-
2020年06月
研制信息
- 起草单位:
- 起草人:
- 出版信息:
- 页数:12页 | 字数:- | 开本: -
内容描述
ICS67.050
X04
DB37
山东省地方标准
DB37/T3991—2020
食品中溴氰虫酰胺残留量的测定
液相色谱-质谱/质谱法
Determinationofcyantraniliproleresidueinfoods—Liquidchromatography-tandem
massspectrometry
2020-06-08发布2020-07-08实施
山东省市场监督管理局发布
DB37/T3991—2020
前言
本标准按照GB/T1.1—2009给出的规则起草。
本标准由青岛海关提出、归口并组织实施。
本标准起草单位:青岛海关技术中心、黄岛海关。
本标准主要起草人:崔淑华、郭庆龙、张谦、刘宏玉、张雪琰、刘成帅、崔伟佳、李洲、辛文。
I
DB37/T3991—2020
食品中溴氰虫酰胺残留量的测定液相色谱-质谱/质谱法
1范围
本标准规定了食品中溴氰虫酰胺残留量的液相色谱-质谱/质谱检测方法。
本标准适用于大米、玉米、甘蓝、番茄、洋葱、干辣椒、苹果、猪肉、鸡肝、牛奶、鸡蛋中溴氰虫
酰胺残留量的测定,其它食品可参照执行。
2规范性引用文件
下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅所注日期的版本适用于本文
件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。
GB2763食品安全国家标准食品中农药最大残留限量
GB/T6682分析实验室用水规格和试验方法
3原理
试样经乙腈提取,分散固相萃取净化(油脂含量高的样品须先用乙腈饱和正己烷去脂和冷冻去脂)
后,用液相色谱-质谱/质谱仪测定,外标法定量。
4试剂和材料
除另有说明外,所用试剂均为分析纯,水为符合GB/T6682中规定的一级水。
4.1试剂
4.1.1乙腈(CH3CN,75-05-8):色谱纯。
4.1.2甲醇(CH3OH,67-56-1):色谱纯。
4.1.3正己烷(C6H14,110-54-3):色谱纯。
4.1.4乙酸铵(C2H7NO2,631-61-8):色谱纯。
4.1.5氯化钠(NaCl,7647-14-5):用前在450℃灼烧4h,冷却后密封备用。
4.1.6无水硫酸镁(MgSO4,7487-88-9):用前在650℃灼烧4h,贮藏干燥器中,冷却后备用。
4.2溶液配制
4.2.1乙腈饱和正己烷溶液:取适量乙腈加入正己烷中,剧烈振摇,静置至出现明显分层,弃去乙腈
层备用。
4.2.2乙酸铵溶液(5mmol/L):称取0.385g乙酸铵用水溶解并定容至1L。
4.3标准品
溴氰虫酰胺(Cyantraniliprole,C19H14BrClN6O2,CAS号:736994-63-1),纯度≥98.0%。
1
DB37/T3991—2020
4.4标准溶液配制
4.4.1标准储备溶液
准确称取适量的标准品(精确至0.1mg),用乙腈溶解,配制成浓度为1000μg/mL的标准储备溶
液,该储备溶液-18℃保存,保存期为一年。
4.4.2标准中间溶液
准确吸取适量标准储备溶液,用甲醇配制成浓度为10μg/mL的标准中间溶液,该溶液4℃保存,保
存期为一个月。
4.4.3基质标准工作溶液
根据需要准确吸取适量标准中间溶液,用样品空白基质溶液配制成0.002、0.005、0.01、0.02、0.05、
0.1mg/L的系列标准工作溶液。该溶液应现用现配。
4.5材料
4.5.1N-丙基乙二胺(Primarysecondaryamine,PSA):粒度40~60μm。
4.5.2十八烷基硅烷键合相(C18):粒度40~60μm。
4.5.3有机滤膜:0.22μm。
5仪器和设备
5.1液相色谱-三重四级杆质谱仪:配备电喷雾离子源(ESI)。
5.2高速组织捣碎机。
5.3高速粉碎机。
5.4匀浆机。
5.5天平:感量0.01mg和0.01g。
5.6振荡器。
5.7超声波仪。
5.8离心机,转速不低于8000r/min。
5.9涡旋混合器。
5.10具塞离心管:50mL,10mL。
6试样制备与保存
6.1大米、玉米、干辣椒
取500g代表性样品,用高速粉碎机处理至粉状,均分成两份,分别装入洁净容器作为试样,密封
并做好标识。于-18℃以下保存。
6.2甘蓝、番茄、洋葱、苹果
取500g代表性样品,用匀浆机制成匀浆,均分成两份,分别装入洁净容器作为试样,密封并做好
标识。于-18℃以下保存。
6.3猪肉、鸡肝
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DB37/T3991—2020
取500g代表性样品,用高速组织捣碎机制成糊状,均分成两份,分别装入洁净容器作为试样,密
封并做好标识。于-18℃以下保存。
6.4牛奶、鸡蛋
取500g代表性样品,充分混匀,均分成两份,分别装入洁净容器作为试样,密封并做好标识。于
-18℃以下保存。
7分析步骤
7.1提取
7.1.1大米、玉米
称取4g试样(精确至0.01g)于50mL具塞离心管中,加5mL水混匀,放置30min。准确加入20.0
mL乙腈振荡提取20min,超声提取5min后加入3g无水硫酸镁和2g氯化钠,涡旋振荡1min,8000r/min
离心5min后,待净化。
7.1.2甘蓝、番茄、洋葱
称取10g试样(精确至0.01g)于50mL具塞离心管中。准确加入20.0mL乙腈振荡提取20min,超
声提取5min后加入3g无水硫酸镁和2g氯化钠,涡旋振荡1min,8000r/min离心5min后,待净化。
7.1.3干辣椒
称取4g试样(精确至0.01g)于50mL具塞离心管中,加15mL水混匀,放置30min。准确加入20.0
mL乙腈振荡提取20min,超声提取5min后加入3g无水硫酸镁和2g氯化钠,涡旋振荡1min,8000r/min
离心5min后,待净化。
7.1.4猪肉、鸡肝、牛奶、鸡蛋
称取4g试样(精确至0.01g)于50mL具塞离心管中,加5mL水混匀(检测牛奶时,不需加水),
放置30min。准确加入20.0mL乙腈振荡提取20min,超声提取5min后加入3g无水硫酸镁和2g氯化钠,
涡旋振荡1min,8000r/min离心5min后,待净化。将10mL上清液转移至50mL具塞离心管中,加入
10mL乙腈饱和正己烷,涡旋振荡2min,静置分层,弃去正己烷层,再加入10mL乙腈饱和正己烷重复
操作一次,然后将离心管置于-18℃冷冻30min,迅速取出2mL提取液,待净化。
7.2净化
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