DB41/T 1516-2017 犬瘟热、犬细小病毒二重TaqMan MGB荧光定量PCR检测方法
DB41/T 1516-2017 Canine distemper virus and canine parvovirus TaqMan MGB fluorescence quantitative PCR detection method
基本信息
发布历史
-
2017年12月
研制信息
- 起草单位:
- 起草人:
- 出版信息:
- 页数:10页 | 字数:- | 开本: -
内容描述
ICS65.020.30
B41
DB41
河南省地方标准
DB41/T1516—2017
犬瘟热病毒、犬细小病毒二重TaqManMGB
实时荧光PCR检测方法
2017-12-06发布2018-03-06实施
河南省质量技术监督局发布
DB41/T1516—2017
前言
本标准按照GB/T1.1—2009给出的规则起草。
本标准由河南省畜牧局提出。
本标准起草单位:河南省动物疫病预防控制中心,驻马店市动物疫病预防控制中心,三门峡市动物
疫病预防控制中心,鹤壁市畜产品质量监测检验中心,信阳市动物疫病预防控制中心,平顶山市动物疫
病预防控制中心。
本标准主要起草人:闫若潜、班付国、王华俊、赵雪丽、谢彩华、刘梅芬、赵明军。
本标准参加起草人:杨晴、孙素芳、曹伟伟、王淑娟、郭育培、王建科、黄清、韩楠、马超锋、朱
前磊,杨海波、李方方。
I
DB41/T1516—2017
犬瘟热病毒、犬细小病毒二重TaqManMGB实时荧光PCR检测方法
1范围
本标准规定了犬瘟热病毒(CDV)、犬细小病毒(CPV)二重TaqManMGB实时荧光PCR(FQ-PCR)检
测样品采集、处理、存放及运输,操作方法及结果判定。
本标准适用于对疑似CDV、CPV感染动物的唾液、鼻液、眼角分泌物、粪便、肠内容物、血清等待检
样品和死亡动物的淋巴结、扁桃体、肺脏、脾脏、肾脏等组织样品的病毒核酸检测。
2试剂和仪器设备
2.1试剂
2.1.1拭子悬液(见附录A),组织悬液(见附录A),以上试剂-20℃保存。
2.1.2裂解液(TriZol),氯仿,1×核酸电泳缓冲液,0.01mol/L(pH7.2)的磷酸盐缓冲液(PBS)
(见附录A),二乙基焦碳酸酯处理水(DEPC处理水)(见附录A),以上试剂4℃保存。
2.1.3异丙醇,75%乙醇,-20℃保存。
2.1.4消化液Ⅰ,TE缓冲液(见附录A),以上试剂常温保存;消化液Ⅱ(见附录A),阳性对照、
阴性对照(见附录A),以上试剂置-20℃保存。
2.1.5酚/氯仿/异戊醇混合液(25:24:1)(见附录A),试剂4℃保存。
2.1.6TaqManFQ-PCR检测用上、下游引物及探针序列参见附录B。
2.1.7犬瘟热病毒(CDV)、犬细小病毒(CPV)二重TaqManFQ-PCR反应混合液组成、说明及使用注
意事项参见附录C。
2.2仪器设备
实时荧光定量PCR仪,高速冷冻离心机(12000×g以上),生物安全柜,恒温水浴锅,2℃~8℃
冰箱,-70℃冰箱,单道微量移液器(0.1µL~2.5µL,0.5µL~10µL,2µL~20µL,20µL~200µL,
100µL~1000µL),组织匀浆器或研钵,真空干燥器(非必备)。
3样品采集、处理、存放及运输
3.1样品采集及处理
3.1.1疑似感染动物样品
用拭子采集疑似CDV、CPV感染动物唾液、鼻液、眼角分泌物、粪便、肠内容物悬液等样品,放入
盛有1.0mL拭子悬液(见附录A)的Eppendorf管中,然后将样品悬液转入无菌Eppendorf管中,4℃
条件下5000r/min离心10min,取上清转入新的无菌Eppendorf管中,编号备用。
3.1.2组织样品
1
DB41/T1516—2017
组织样品采集时应采取有明显病变的淋巴结、扁桃体、肺脏、脾脏、肾脏等组织样品。用无菌的剪
刀和镊子剪取待检样品0.5g左右于组织匀浆器或研钵中充分匀浆或研磨,再加0.3mL~0.5mL组织
悬液混匀,然后将组织悬液转入无菌Eppendorf管中,4℃条件下5000r/min离心10min,取上清转
入新的无菌Eppendorf管中,编号备用。
3.1.3血清样品
用无菌注射器自耳静脉或前腔静脉采集血液3mL~5mL,待血清析出后直接吸取至无菌Eppendorf
管中,编号备用。
3.2存放与运送
采集的样品密封后,采用保温壶或保温桶加冰密封,
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